遠心濃縮器は液体クロマトグラフィー(LC、特にHPLCとLC-MS)試料前処理において「試料濃縮と溶媒置換」の核心的役割を果たし、分析感度と方法互換性を高めるツールである。
LC分析前に遠心濃縮器を使用するのは、主に次の3つの重要な問題を解決するためである:
1、濃縮濃縮し、感度を高める:大体積サンプル中の微量目標物を小体積に濃縮し、その濃度がLCまたはLC-MSの検出限界以上になるようにする。これは常を参照してください。
2、溶媒置換、互換性の向上:目標物をLC流動と互換性のない溶媒(例えば高濃度有機相、イオン対試薬、揮発性溶媒)から流動と互換性のある溶媒に移す。
3、干渉を除去し、サンプルを精製する:温和な蒸発を通じて、サンプル基質中の揮発しやすい干渉物質或いは緩衝塩を除去し、基質効果と機器汚染を減少する。
環境水サンプル分析:1リットルの水サンプル中の残留農薬、抗生物質などを固相抽出により溶出した後、溶出液の体積は5-10 mLの可能性がある。遠心分離により0.5-1 mLに濃縮し、濃度を10-20倍に高めて、LC-MSに検出される。
生物サンプル分析:血漿、尿中の薬物代謝物濃度は極めて低い。蛋白質沈殿または液液抽出後、有機相の体積は大きく、乾燥または小体積に濃縮し、再溶解して試料に注入する必要がある。
天然産物のスクリーニング:植物粗抽出物は体積が大きく、目標活性成分濃度が低く、濃縮後にLC指紋パターン分析を行うことができる。
複雑な前処理後、試料の溶媒環境は直接注入には適さない可能性がある:
イオン対クロマトグラフィー後のサンプル:その後LC-MSで分析するには、イオン対試薬(例えばTFA、ヘプタフルオロ酪酸)を除去しなければならず、そうしないとイオン化信号が深刻に抑制される。方法は:サンプルを乾かし、MSに適した溶媒で再溶解する。正相抽出後の試料:収集した溶離液はn−ヘキサン、クロロホルムなどの非極性溶媒であり、逆相LC流動相とは相互溶解しない。乾燥後、メタノール/アセトニトリル/水で再溶解する必要があります。高有機相試料:固相抽出の溶離液はしばしば高比アセトニトリルまたはメタノールである。弱保持化合物分析を行いたい場合は、直接注入するとピーク形状が不良になる可能性があります。部分的に乾かした後、初期流動相で再溶解することができる。
原則:目標物の安定性を保証する前提の下で、できるだけ効率的である。
揮発性有機溶媒:例えばアセトニトリル、メタノール、アセトン、室温または30〜40℃でよく、真空下の沸点は低い。水溶液:十分な蒸発エネルギーを提供するためには、より高い温度、45〜60℃が必要である。熱感受性物質:例えば蛋白質、ポリペプチド、いくつかの抗生物質は、≦35℃の低温、甚だしきに至っては真空濃縮のみを使用すべきである。ゴール判定と「オーバードライ」防止
LC-MS応用のタブー:サンプルを過度に乾燥する。特定の目的物(特に特定の極性化合物またはタンパク質)は乾燥後、不可逆的に管壁に吸着し、再溶解回収率が極めて低い結果となる。
実践:ちょうど乾燥しているか、少量の液膜が残っているまで濃縮するとすぐに停止する。経験不足者の場合は、タイミングチェックを設定するか、光学センサ付きモデルを使用してゴールを自動的に判断することができます。
溶媒選択:複素溶媒はできるだけLCの初期流動相組成に近いものでなければならない。例えば、LC方法が5%アセトニトリル/95%水から始まる場合、5%アセトニトリル水溶液で再溶解する方が純アセトニトリルよりも良く、溶媒効果によるピーク歪みを回避することができます。
操作:複素溶媒を添加した後、渦振動を必要とし、そして超音波で数分間溶解を補助し、目標物の溶解を確保し、管壁で損失しないようにする。
高濃度サンプルを濃縮すると、コールドトラップとキャビティが残留する可能性があります。サンプル室とコールドトラップを定期的に清掃する。
異なるロットのサンプル、特に濃度の差が大きい場合は、別々に運転するか、独立したロータを使用することをお勧めします。
液体クロマトグラフィー分析において、遠心濃縮器は決してあってもなくてもよい設備ではない。これは粗抽出試料と注入可能溶液との間の重要な橋渡しである。正確な濃縮と溶媒置換により、「測定できない」を「測定できる」に、「直接注入できない」を「互換性」に変えることができます。